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Livin在乳腺癌中的表达及其与Caspase3,Ki67表达的关系

发表时间:2009-06-22     浏览次数:172次

文章摘要:目的: 探讨Livin在乳腺癌中的表达和临床意义及其与Caspase3蛋白表达和细胞增殖的相互关系。方法: 采用免疫组化SP法检测Livin在正常乳腺组织、乳腺增生性病变、乳腺非浸润性癌和乳腺浸润性癌组织中Livin蛋白和Caspase3蛋白表达以及Ki67在乳腺癌组织中的表达。结果: Livin蛋白在正常乳腺组织、乳腺增生性病变、乳腺非浸润性癌和乳腺浸润性癌组织中阳性率为7.1%,29.8%,65.0%,73.1%;Caspase3蛋白分别为92.9%,71.4%,45.0%,34.6%,两者差

作者:陈建华,范钦和,丛玲华,

作者单位:1.南京医科大学第一附属医院病理科,江苏 南京 210029; 2.江苏大学附属人民医院病理科,江苏 镇江 212002

    【摘要】    目的: 探讨Livin在乳腺癌中的表达和临床意义及其与Caspase3蛋白表达和细胞增殖的相互关系。方法: 采用免疫组化SP法检测Livin在正常乳腺组织、乳腺增生性病变、乳腺非浸润性癌和乳腺浸润性癌组织中Livin蛋白和Caspase3蛋白表达以及Ki67在乳腺癌组织中的表达。结果: Livin蛋白在正常乳腺组织、乳腺增生性病变、乳腺非浸润性癌和乳腺浸润性癌组织中阳性率为7.1%,29.8%,65.0%,73.1%;Caspase3蛋白分别为92.9%,71.4%,45.0%,34.6%,两者差异均有统计学意义(P<0.01)。Livin表达与临床分期、淋巴结转移和年龄有关(P<0.05),与肿瘤大小和组织学分级无关。Livin蛋白与Caspase3蛋白在乳腺浸润性癌表达呈负相关(P<0.01)。在乳腺非浸润性癌中两者相当,无相关性(P>0.05)。Livin蛋白表达阳性的乳腺癌Ki67的标记细胞增殖指数(47.32±22.34)明显高于Livin蛋白表达阴性的乳腺癌细胞Ki67的标记细胞增殖指数(18.01±23.34)( P<0.01)。结论: Livin蛋白在乳腺癌中表达上调,可作为判断乳腺癌预后新的分子标记物,成为乳腺癌诱导凋亡治疗的新靶点。Livin不仅参与细胞凋亡的调控,还促进了细胞增殖及肿瘤发生、发展。

【关键词】  乳腺癌 Livin 免疫组织化学 凋亡 增殖

  Expresstion of Livin in breast carcinoma and its relationship with Caspase3 and Ki67

  CHEN Jianhua, FAN Qinhe, CONG Linghua, SHI Yang, YAO Chenghu

  1. Department of  Pathology,the First Affiliated Hospital of Nanjing Medical University ,Nanjing  Jiangsu 212002;

  2. Department of Pathology,the Affiliated People's Hospital of Jiangsu University,Zhenjiang Jiangsu 210029,China

  [Abstract]  Objective: To investigate expression of  Livin and its relationship with Caspase3  and proliferation in breast carcinoma. Methods: To detect Livin protein and Caspase3 protein expression and Ki67 expression in the normal breast tissues,proliferative breast disease(epithelial hyperplasia),breast preinvasive carcinoma and breast invasive carcinoma by immuohistochemisitry (SP method).  Results: The positive rates of Livin protein expression were 7.1%,29.8%,65.0%,73.1% in the normal breast tissues,proliferative breast disease,breast preinvasive carcinoma and breast invasive carcinoma and the positive rate of  Caspase3 protein were 93%,71%,45%,34% respectively .The expression of Livin and Caspase3 in four  groups had ststistical difference(P<0.01). Livin expression was related to clinic stage,lymphnode metastasis and age(P<0.05),but not to tumor size or histological grade (P>0.05).The expression of Caspase3 was negatively correlated with the expression of Livin(P<0.01),but not in breast preinvasive carcinoma. The Ki67 indexes were significantly higher in Livin positive tumors(47.32±22.34) than those in the negative ones(18.01±23.34)( P<0.01).  Conclusion: High incidence of positive expression of Livin indicates it may be served as a molecular marker of breast carcinoma and a new target for apoptosisinducing therapy of breast carcinoma . Livin was not only involved in control apoptosis,but also accelerated proliferation.

[Key words]  breast carcinoma; Livin gene; immuohistochemisitry; apoptosis; proliferation

    近年来,乳腺癌发病率及检出率正逐年上升,已居女性恶性肿瘤之前列。目前研究表明肿瘤的发生、发展与细胞凋亡基因及抑制细胞凋亡基因相互调控作用密切相关。Livin基因是2000年3个试验小组差不多同时发现的抑制细胞凋亡基因[1-3],其作用途径主要通过与Caspase家族相互作用[3],而执行型Caspase3与 凋亡关系最密切,参与多种因素诱导的细胞凋亡。本研究应用免疫组织化学技术检测乳腺癌中Livin蛋白的表达情况并探讨其与Caspase3的表达以及细胞增殖的关系。

  1  材料与方法

  1.1  资料来源 

    乳腺肿瘤组和对照组标本均取自江苏大学附属人民医院病理科2006年1月~2007年1月手术标本,标本离体后立即切块固定,石蜡切片,乳腺癌全部病例行根治手术,术前均未接受过放疗或化疗。所有病例均为女性,年龄29~80岁,平均年龄为(52.68±12.61)岁。肿瘤大小(2.44±0.99)cm。非浸润性导管癌20例,包括囊内乳头状癌3例。浸润性癌中非特殊类型47例,小叶癌4例,黏液癌1例。所有病例均经HE切片证实,非特殊类型47例按WHO所采用的ScarffBloomRichardson(SBR)标准[5]进行组织学分级,Ⅰ级14例,Ⅱ级16例,Ⅲ级17例。按国际抗癌联盟的TNM分期法分期,Ⅰ期28例,Ⅱ期30例,Ⅲ期7例,Ⅳ期7例。

  1.2  免疫组化及判断标准

  1.2.1  方法
 
  采用免疫组化SP法,Livin(1∶50)兔抗人多克隆抗体购自武汉博士德生物工程有限公司,可检测Livinα和Livinβ。Caspase3(1∶100)单克隆抗体购自美国Labvision公司,Ki67和SP试剂盒购自福州迈新生物技术开发公司。常规石蜡切片经二甲苯脱蜡,梯度乙醇至水,抗原修复后,3%H2O2阻断内源性过氧化物酶,一抗4℃冰箱过夜,依次加入二抗、三抗室温下孵育各10 min,各步骤间以PBS漂洗,PBS中含有1%Tween20液,最后DAB显色。苏木精复染、脱水、透明、封固。以PBS代替一抗作为阴性对照。

  1.2.2  判断标准
 
  Livin和Caspase3阳性产物定位于细胞质内,细胞质呈棕黄色或出现棕褐色颗粒为阳性。采用半定量积分法先按染色强度评分: 凡显色强度与背景无明显差别者为阴性,记为0分,1分为浅黄色,2分为棕黄色,3分为棕褐色。再按阳性细胞所占百分比评分:0分为阴性,1分为阳性细胞≤10%,2分为11%~50%,3分为51%~75%,4分为>75%,染色强度与阳性细胞数乘积≥2分为阳性(图1,2,4)。Ki67阳性产物定位于细胞核,细胞核内出现棕黄色或棕褐色颗粒为阳性。

  1.3  增殖指数
 
    采用HMIAS2000高清晰度彩色图文分析系统,每张切片选择10个高倍视野,每个视野计数100个细胞,共计数1000个肿瘤细胞。计数Ki67染色阳性细胞所占的百分比,即为增殖指数。

  1.4  统计学处理 

    用SPSS11.0统计软件,选择χ2检验和精确概率法。以P<0.05为差异有统计学意义。

  2  结  果

  2.1  Livin蛋白和Caspase3蛋白表达及其相互关系

    Livin蛋白在正常乳腺组织、乳腺增生性病变、乳腺非浸润性癌和乳腺浸润性癌四组病例中表达分别为7.1%,29.8%,65.0%,73.1%;Caspase3蛋白分别为92.9%,71.4%,45.0%,34.6%,两者差异均有统计学意义(P<0.01)。Livin蛋白在病变进展过程中呈递增趋势,而Caspase3蛋白呈递减趋势。

    Livin蛋白和Caspase3蛋白进行相关分析发现Livin蛋白与Caspase3蛋白在乳腺浸润性癌表达呈负相关(P<0.01),见表1。在乳腺非浸润性癌中两者相当,相关性不显著(P>0.05),见表2。但总的来说,在乳腺癌中两者表达呈负相关(P<0.01) ,见表3。表1  乳腺浸润性癌中Livin蛋白表达与Caspase3表达的关系(略)表2  乳腺非浸润性癌中Livin蛋白表达与Caspase3表达的关系(略)表3  乳腺癌中Livin蛋白表达与Caspase3表达的关系(略)
2.2  Livin蛋白在乳腺癌中的表达与临床病理参数的关系

    Livin蛋白的表达与临床分期、淋巴结转移和年龄有关(P<0.05),临床分期越高,表达越强,年龄小者表达较强,淋巴结转移者表达率高;与肿瘤大小、组织学分级均无关,见表4。表4  Livin蛋白在乳腺浸润性癌中的表达与临床病理参数的关系(略)
   
  2.3  乳腺癌中Livin表达与癌细胞增殖指数的关系 

    51例Livin表达阳性的乳腺癌组织中Ki67标记的增殖指数为(47.32±22.04),21例Livin阴性表达的乳腺癌组织中Ki67的标记增殖指数为(18.01±23.34),两者之间比较差异有统计学意义(P<0.01)。

  3  讨  论
       
  Livin基因是一种新发现的IAP成员[1],基因位于人染色体20 q13.3,全长4.6 kb,包含7个外显子及6个内含子,其基因转录产物有两种mRNA亚型,分别编码298个氨基酸蛋白质(α)和280个氨基酸蛋白质(β),Livin蛋白N端仅包含一个BIR结构,C端含一个RING环指结构。目前报道Livin基因只在黑色素瘤、结肠癌、前列腺腺癌和膀胱癌等少数肿瘤细胞中及在胎盘、胚胎组织中表达,在多数正常成人组织中不表达。这一表达的特异性使得Livin基因成为目前国际研究的热点[5]。

    Livinα、β及蛋白主要表达于细胞质[1-3],但Kasof等[3]认为Livin细胞分布与Survivin相似,即可在胞质和胞核内呈纤维丝状表达,而Ka和Hunt[6]对胎盘、滋养层细胞和绒毛膜癌细胞系染色,阳性显色仅定位于胞核。本实验中所有阳性显色均位于肿瘤细胞的胞质中,这与Vucic等[7]对乳腺癌研究发现Livin在细胞中主要表达于胞质而不是纺锤体上的结果是一致的。

    Livin抑制细胞凋亡作用主要通过其BIR区(位于Livin的86至154氨基酸处)与半胱氨酸蛋白水解酶(Caspases家族)结合,抑制其活性,与Caspases蛋白家族中的多个成员相互作用,尤其是Caspases3/7和Caspases9的活性,阻止Caspase蛋白在细胞凋亡时执行蛋白切除功能,达到阻断凋亡受体及以线粒体为基础的凋亡途径而起作用. Caspase3是Caspase家族中最重要的凋亡执行者之一,全部或部分负责大量底物的蛋白水解,抑制Caspase3的活性或拮抗其功能可使细胞凋亡受抑,说明Caspase3对细胞凋亡是必需的。本实验结果表明Livin蛋白在正常乳腺组织、乳腺增生性病变、乳腺非浸润性癌和乳腺浸润性癌四组病例中表达呈递增趋势,而Caspase3蛋白呈递减趋势。这说明Livin和Caspase3在乳腺癌发生、发展中的起着重要作用。Livin与Caspase3的乳腺癌中表达呈负相关(P<0.01),这证实Livin可通过对诱发凋亡的效应性蛋白酶Caspase3有直接抑制作用[3]。在细胞中Livin蛋白将Caspase3牢牢地连接在中心粒上,而使Caspase3无法发挥蛋白水解的催化功能。凋亡途径因此失去重要的酶,而无法进行凋亡酶依赖的凋亡。此外,在非浸润乳腺性癌中两者相当,无相关性(P>0.05)。这可能在乳腺性癌进展中Livin有着重要的作用。

    本研究发现Livin表达与临床分期、淋巴结转移和年龄有关,可成为判断乳腺癌预后不良新的标记物,年龄小者作用更强。这可能说明年轻患者乳腺癌发生过程中与Livin关系更为密切,还有待进一步探讨。

    Ki67被认为是一个判断细胞凋亡和增殖的有价值的标记物,和肿瘤的性质、复发、转移和预后有密切的关系。含有BIR功能区的IAP蛋白通过抑制有丝分裂中期进入有丝分裂后期[8]。实验研究发现Livin蛋白的表达与乳腺癌细胞Ki67的表达呈明显正相关,Livin蛋白表达阳性的乳腺癌Ki67的标记指数明显高于Livin蛋白表达阴性的乳腺癌细胞的Ki67标记指数(P<0.01)。说明Livin不仅参与凋亡的调控,还促进了细胞增殖。

已有文献报道,Livin在人乳腺癌细胞系MCF7,MDAMB435中有少量表达。乳腺癌血清中抗Livin抗体表达率(32.6%)象Survivin一样,Livin可能是乳腺癌患者的主要肿瘤抗原[9]。Livin mRNA为靶点的反义核酸作用与MCF7乳癌细胞,能够有效地抑制Livin基因的表达,增加Caspase3的活性,诱导MCF7细胞凋亡,明显抑制其生长,Livin可能会成为抗肿瘤治疗新的基因靶点[10]。

    总之,Livin在乳腺癌中表达上调,提示在乳腺癌发生、发展中起重要作用,可作为判断乳腺癌预后新的分子标记物,为乳腺癌基因治疗提供新靶点。Livin不仅参与细胞凋亡的调控,还促进了细胞增殖及肿瘤发生、发展。
   
  (本文图1~图4见插图)

【参考文献】
    [1]Lin JH,Deng G,Huang Q,et al. KIAP,a navel member of the inhibitor of apoptosis protein family[J]. Biochem Biophys Res Commun,2000,279(3):820-831.

  [2]Vucic D,Stennicke HR,Pisabarro MT,et al. MLIAP,a novel inhibitor of apoptosis that is preferentially expressed in human melanomas[J].Curr Biol,2000,10(21):1359-1366.

  [3]Kasof GM,Gomes BC. Livin,a novel inhibitor of apoptosis protein family member[J]. J Biol Chem,2001,276(5):3238-3246.

  [4]Bloom H,Richardson W. Histological grading and prognosis in breast cancer[J].Br J cancer,1957,9(11):359-377.

  [5]Gzzaniga P,Gradilone A,Giuliani L,et al.Expression and prognostic significance of Livin,Survivin and other apoptosis related genes in the progression of superficial bladder cancer[J].Ann Oncol,2003,14(1):85-90.

  [6]Ka H,Hunt JS. Temporal and spatial patterns of expression of inhibitors of apoptosis in human placentas[J]. Am J Pathol,2003,163(2):413-422.

  [7]Vucic D,Deshayes K,Ackerly H,et al. SMAC negatively regulates the anti2apoptotic activity of melanoma inhibitor of apoptosis (MLIAP)[J]. J Biol Chem,2002,277(14):12275-12279.

  [8]Fraser AG,James C,Evan GI,et al. Caenorhabditis elegans inhibitor of apoptosis protein (IAP) homologue BIR1 plays a conserved role in cytokinesis[J].Curr Biol,1999,9(6):292-301.

  [9]Yagihashi A,Ohmura T,Asanuma K,et al. Detection of autoantibodies to survivin and livin in sera from patients with breast cancer[J]. Clin Chim Acta,2005,362(1-2):125-130.

  [10]Zhang HD,Yuan SJ,Chen HP,et al.Indution effects of antisense phosphorothioate oligodeoxynucleotides of Livin mRNA on apoptosis in MCF7 cells[J].Chin J Clin Pharm Ther,2004,9(12):1353-1356.