15018752330

您所在的位置:首页 > 文献频道 > 文献频道详情

3种实时荧光PCR试剂在结核分枝杆菌核酸检测中的临床应用评价

发表时间:2014-05-19     浏览次数:531次

文章摘要:目的评价不同结核分枝杆菌核酸(TB-DNA)试剂盒的性能和应用。方法本文通过采用中山达安、德国凯杰及上海之江TB-DNA检测试剂盒平行检测抗酸染色阳性的临床标本,并用非结核病患者标本来验证假阳性率。结果44例抗酸染色阳性标本中,中山达安试剂盒检测出44例TB-DNA阳性,德国凯杰试剂盒检测出43例阳性,上海之江试剂盒检测出40例阳性;3种试剂盒检测20例非结核患者的标本,TB-DNA均为阴性。3种试剂盒的阳性检出率分别为100%、97.7%和90.9%,差异无统计学意义(χ2=5.40,犘>0.05)。结论各实验室可灵活选择临床检测试剂盒。

  结核病是目前严重威胁人类健康的重大传染性疾病之一,每年有约200万人死于该病。结核病的临床表现多样,可以累及全身各个系统,尤其是肺外结核病的临床症状往往十分隐匿,给临床诊断带来极大困难。实验室检查对结核病防治起着不可或缺的作用[1-2].实时荧光定量PCR技术自建立以来,发展迅速、应用广泛,表明其具有强大的生命力,由于具有定量、特异、灵敏和快速等特点,已被国内外公认为一个快速可靠的检测方法[3-4].目前市场上检测结核分枝杆菌核酸(TB-DNA)的试剂较多,由于核酸提取方法、扩增目的片段等技术不同,各种试剂的特异性、灵敏度等存在着一定差异。本研究选用国内常用的3种TB-DNA检测试剂盒(即中山达安、德国凯杰和上海之江)对本院2013年1~6月抗酸染色阳性的临床标本进行TB-DNA检测,比较3种试剂的阳性检出率。

  1 资料与方法

  1.1一般资料收集2013年1~6月川北医学院附属医院传染科、呼吸内科、儿科、泌尿外科等科室的64例患者的标本(包括痰液、尿液和脓液标本),于-40℃冰箱中保存备用。其中44例临床确诊为结核患者(男性29例,女性15例,年龄12~88岁)的标本被检验科微生物室检测出抗酸染色阳性,作为A组标本。其余20例标本来自非结核患者,临床诊断为慢性阻塞性肺疾病急性加重(AECOPD),其中,男性10例,女性10例,年龄62~85岁,作为B组标本。

  1.2仪器与试剂

  1.2.1仪器瑞士RocheLightCycler480Ⅱ实时荧光定量PCR仪、HealForce生物安全柜、离心机、高速离心机、恒温金属浴、混匀器、微量加样器等。

  1.2.2试剂消化液为4%NaOH溶液(自配),TB-DNA检测试剂盒由中山达安、德国凯杰及上海之江试剂公司分别提供。

  1.2.3试剂盒阳性判定标准3种试剂盒检测阳性判定标准为:在增长曲线呈S型的情况下,中山达安TB-DNA检测试剂盒以CT值小于30判定为阳性,德国凯杰TB-DNA检测试剂盒以CT值小于或等于37判定为阳性,上海之江TB-DNA检测试剂盒以CT值小于或等于38判定为阳性。在CT值超过检测上限时,需重复测定或者稀释后测定,再根据以上条件进行判定。

  1.3方法

  1.3.1不同试剂的反应条件引物探针浓度和反应条件均按照每个试剂盒优化后的最佳条件进行。反应条件如下:中山达安(93℃2min;93℃45s,55℃60s10个循环;93℃30s,55℃45s30个循环),德国凯杰(37℃3min;93℃1min;93℃5s,60℃40s40个循环),上海之江(37℃2min;94℃2min;93℃15s,60℃60s40个循环)。仪器通道选择F1通道,荧光信号分别在55℃、60℃、60℃收集,收集方式为SIN-GLE.

  1.3.2不同试剂的反应体系见表1.

  1.3.3A、B组标本的检测

  1.3.3.1TB-DNA的提取将收集到的痰液及脓液标本加4%的NaOH溶液充分液化后,吸上清至1.5mLEP管内,尿液则直接离心取沉淀,然后按照试剂盒说明书提取DNA.

  1.3.3.2TB-DNA的检测对收集到的64例标本运用中山达安、德国凯杰及上海之江公司提供的TB-DNA检测试剂盒分别进行检测。

  1.4统计学处理采用SPSS16.0软件进行统计学分析,不同方法检测的阳性率的比较采用χ2检验,以犘<0.05为差异有统计学意义。

  2结果

  各试剂盒的检测结果见表2.A组的44例标本,其中,中山达安TB-DNA检测试剂盒阳性检出率为100%,德国凯杰TB-DNA检测试剂盒阳性检出率为97.7%,上海之江TB-DNA检测试剂盒阳性检出率为90.9%.B组20例标本3种试剂检测均为阴性。3种方法检测TB-DNA的结果进行比较,差异无统计学意义(χ2=5.40,犘>0.05)。

  讨论

  结核病病原学实验诊断方法的研究一直为人们所关注。国内目前的检测方法以抗酸染色查找抗酸杆菌为主,该方法因简便、快速、费用低廉等优点而在结核病诊断中发挥着重大作用,但也存在着敏感度低、特异性差,无法辨别死菌与活菌等缺点[5-6].细菌培养法被誉为结核病诊断的“金标准”,该方法是鉴定死菌与活菌的可靠方法,但传统结核分枝杆菌细菌培养法,细菌的生长繁殖速度过于缓慢,单个菌落在固体培养基中生长成直径1mm的菌落需4周,难以得到理想的检出速度,现临床上较少使用[7].实时荧光定量PCR是通过荧光染料或荧光标记的特异性探针,对PCR产物进行标记跟踪,实时在线监控反应过程,并结合相应的软件对产物进行分析,计算待测样品初始模板量的一种方法[8].该方法较上述两种方法具有反应灵敏、特异性高、高效快速等优点。就结核病诊疗而言,国内外已有不少研究报道,实时荧光定量PCR是结核病诊断的有效方法之一[9-10].在确保标本的正确处理,DNA提取操作的规范化前提下,实时荧光定量PCR核酸检测试剂盒的选取是影响结核分枝杆菌阳性检出率的重要因素。作者以临床实验室用户的角度来探讨了3种不同厂家的试剂检测结果是否存在差异。A组标本由中山达安试剂盒检测的阳性检出率为100%,德国凯杰试剂盒检测的阳性检出率为97.7%,上海之江试剂盒检测的阳性检出率为90.9%.B组标本由3种试剂进行检测,结果均为阴性,假阳性率为0.结果显示,3种试剂盒检测结果的差异无统计学意义(犘>0.05)。

  本次研究中,3种试剂对64例样本检测共有4例样本结果不符。44例抗酸染色阳性样本中,实时荧光定量PCR检测结果中有4例为阴性(上海之江阴性3例,德国凯杰和上海之江均为阴性1例)。本研究未对样本进行结核分枝杆菌培养,4例阴性结果的出现可能是实时荧光定量PCR检测过程中出现的假阴性。实时荧光定量PCR检测的假阴性常见原因有:(1)PCR试剂盒本身原因,Taq酶实时荧光定量PCR是利用Taq酶在60℃水解荧光探针的特性,采用两步法扩增,通过适时检测荧光信号从而实现定量分析。此时,反应系统中引物和探针的退火温度变成了60℃,一旦有引物与模板或探针与模板的不匹配,就有可能导致假阴性的发生[11].(2)PCR反应可以被存在于特定样本中的物质所抑制[12].(3)PCR反应过程中的人为因素,3种试剂盒TB-DNA的提取方法均为煮沸裂解法,该方法在核酸提取过程中手工操作步骤较多,需用手工吸取裂解上清液至扩增反应液中,然后在PCR仪上进行扩增,核酸扩增结果还需人为调整设置各项参数才能得出。操作不当就可能会引起DNA的丢失,造成检测结果的假阴性。本研究对3种试剂进行了综合比较,可指导TB-DNA检测试剂盒的合理选择,对结核病感染的及时诊治有实用价值。3种试剂盒结果的符合率比较,差异无统计学意义(犘>0.05),各实验室可灵活选择临床检测试剂盒。

  参考文献

  [1]王华钧,孙小军,金法祥,等。4种结核分枝杆菌检测方法的比较[J].中华医院感染学杂志,2012,22(11):2472-2474.

  [2]刘家云,郝晓柯。结核病实验室诊断方法新进展[J].临床检验杂志,2013,31(2):115-117.

  [3]施巧霞,李晓非,杨惠仙,等。实时荧光定量PCR在肺结核诊断中的临床应用[J].云南医药,2007,28(1):22-24.

  [4]梁晓海,黄平东。实时荧光定量聚合酶链反应法检测肺结核患者痰标本价值的对照研究[J].现代中西医结合杂志,2006,15(3):287-288.

  [5]谭守勇,刘志辉,邓向斌。荧光定量PCR检测抗酸染色涂片刮削物中结核分枝杆菌DNA的可行性[J].实用医学杂志,2012,28

  (12):2067-2069.

  [6]张翊,卢建平,叶淼。四种结核分枝杆菌检测方法的临床应用评价[J].中国防痨杂志,2006,28(1):14-17.

  [7]陆宇,朱莉贞,段连山。结核分枝杆菌活菌检测方法及应用[J].中华结核和呼吸杂志,2004,27(6):423-426.

  [8]KubistaM,AndradeJM,BengtssonM,etal.Thereal-timepoly-merasechainreaction[J].MolAspectsMed,2006,27(2/3):95-125.

  [9]陈红兵,周志红,贺润年,等。荧光定量PCR技术在结核杆菌检测中的应用[J].实用医学杂志,2008,24(21):3765-3767.

  [10]ClearyTJ,RoudelG,CasillasO,etal.RapidandspecificdetectionofMycobacteriumtuberculosisbyusingtheSmartCyclerinstru-mentandaspecificfluorogenicprobe[J].JClinMicrobiol,2003,41(10):4783-4786.

  [11]丁世雄,翁彭剑,梁晓岳,等。TaqMan荧光定量PCR检测HBV-

  DNA的假阴性原因分析[J].浙江医学,2004,26(12):943-944.

  [12]纪冬,辛绍杰。实时荧光定量PCR的发展和数据分析[J].生物技

  术通讯,2009,20(4):598-600.

  (收稿日期:2013-12-28)